Метаболизм железа при воспалении
Данная информация предназначена для специалистов в области здравоохранения и фармацевтики. Пациенты не должны использовать эту информацию в качестве медицинских советов или рекомендаций.
Д-р мед. Фолькер Нелс (Volker Nehls), главный врач отдела внутренней
медицины, ревматологического центра Рейна, больницы Санкт-Элизабет.
Личный сайт в интернете:
https://volker-nehls.de/index.html
Технический перевод с немецкого О. Ланге, Германия. Научный редактор врач
Асадулин В. А., Иркутск, март 2011г..
https://immunendokrinologie.de/html/eisen_und_rheuma.html
Инфекционные и другие воспалительные заболевания, в том числе и ревматической
этиологии, как правило, ведут к быстрому снижению сывороточного железа и к
накоплению его в макрофагах. Снижение содержания железа в сыворотке крови при
воспалительных заболеваниях представляет собой функциональный дефицит и не может
быть приравнено к абсолютному недостатку. Ионы железа способствуют воспалению и
катализирует образование разрушительных для тканей активных форм кислорода.
Снижение сывороточного железа является важным защитным механизмом, чтобы
ограничить воспалительный процесс. При инфекциях это – также часть иммунной
стратегии, т. к. бактерии нуждаются в железе, его дефицит приводит к торможению
их роста.
Прием препаратов железа при ревматоидном артрите приводит к активации
воспалительной реакции (Übersicht bei Dabbagh et al., 1993). В частности,
внутривенное введение препаратов железа вызывает появление острого артрита через
24-48 часов после инфузии (Winyard et al., 1987, Blake et al., 1985).
Пероральная терапия препаратами железа в течение трех месяцев 67 больных
ревматоидным артритом не показали увеличения уровня воспаления (Hansen und
Hansen, 1986). Переносимость перорального приема объясняется тем, что с
повышением системной воспалительной активности не увеличивается уровень
сывороточного железа, а только уровень ферритина.
В статье рассматриваются последние результаты изучения метаболизма железа и
сделана попытка ответить на вопрос, в каких случаях ревматических заболеваний
рекомендовать препараты железа.
Теоретические предпосылки.
Железо – незаменимый микроэлемент. Каждый день в двенадцатиперстной кишке
поглощаются около 1-2 мг железа. Ионы железа при помощи транспортных белков
поглощаются эпителиальными клетками кишечника, и остается там, пока при помощи
ферропортина не попадают в кровоток, а затем в ткани организма. Этот шаг жестко
регулируется и определяет количество поглощенного железа. Если железо
посредством ферропортина не поставляется в кровь, то в рамках физиологического
отмирания эпителиальных клеток, удаляется из организма через 2-3 дня.
Энтеральное всасывание железа находится под контролем гормоноподобного пептида
гепцидина, который синтезируется, в основном, в печени и в макрофагах. Недавно
найдены доказательства того, что гепцидин синтезируется и в лимфоцитах (Pinto et
al., 2010). Гепцидин – пептид из 25 аминокислот с антибактериальными свойствами.
Важную роль в синтезе гепцидина играет HFE (Ген гемохроматоза), кодирующий
поверхностный белок основного комплекса гистосовместимости – HLA, который, еще в
не полностью расшифрованном процессе, «измеряет» внеклеточный уровень содержания
железа и при его увеличении даёт сигнал к выработке гепцидина. Гепцидин приводит
к снижению ферропортина и, таким образом, к удалению излишков железа в
отмирающих эпителиальных клетках.
Так как гепцидин подавляет высвобождение железа не только из кишечных
эпителиальных клеток, но и из макрофагов, при воспалительных процессах, иногда
уже в течение нескольких часов, приводит к уменьшению концентрации сывороточного
железа. Под влиянием гепцидина железо сохраняется в гепатоцитах, энтероцитах и
макрофагах, в то время как его отсутствие приводит к высвобождению
внутриклеточно хранящегося железа в плазму крови.
Выброс гепцидина стимулируется высокой концентрацией железа в печени, а также
воспалительными трансмиттерами, в частности, IL-6 (интерлейкин-6). Синтез
гепцидина в макрофагах стимулируется, по видимому, не только IL-6, а и
посредством NF-kappaB (ядерный фактор «каппа-би») и гамма-интерфероном (Sow et
al., 2009). Бактериальные антигены стимулируют выработку макрофагами гепцидина
путем связывания TLR – толл-подобных рецепторов (Takeda et al., 2003).
Сниженный уровень гепцидина определяет патологически повышенное всасывание
железа при гемохроматозе, при особых видах анемий с высоким уровнем железа, при
гепатите С и циррозе печени (Girelli et al., 2009; Nemeth und Ganz, 2009; Iqbal
et al., 2009). Сниженный уровень гепцидина и, как следствие, повышенное
всасывание железа, обнаруживается при дефиците железа, злоупотреблении алкоголем
(Whitfield et al., 2001), анемии и гипоксии.
Небольшой избыток железа обычно не приводит к клиническим симптомам, пока железо
связанно белком, а не присутствует в виде токсичных форм сывороточного железа.
Последние исследования показали, что у носителей гена C282Y гемохроматоза,
небольшой избыток железа, в подавляющем большинстве случаев, протекает
бессимптомно (Allen et al., 2010). При уровне ферритина <1000 µg/l носители гена
C282Y имеют низкий риск развития симптоматического гемохроматоза.
Лактоферрин.
Лактоферрин – железо-связывающий белок, один из трансферринов, которые
содержатся в молоке, слезах, слюне и слизистых выделениях. Лактоферрин также
синтезируется и выделяется активированными гранулоцитами. В более высоких
концентрациях, белок содержится в молозиве. Доказано повышение уровня
лактоферрина в синовиальной жидкости при ревматоидном артрите, этот белок
тормозит воспалительный процесс посредством уменьшения свободного железа (Guillen
et al., 1998)
При аутоиммунных заболеваниях часто обнаруживают ANCA (Anti-neutrophil
cytoplasmic antibody – антинейтрофильные цитоплазматические антитела), связанные
с лактоферрином (Brimnes et al., 1997), которые, однако, не препятствует
связыванию железа белком (Audrain et al., 1996). При системной красной волчанке,
соотношение анти-лактоферриновых антител коррелирует с активностью заболевания (Manolova
и др., 2001; .. Caccavo и др., 2005).
В одной из последних интересных работ разработана новая гипотеза о том, как
стресс может усиливать воспаление. Гормоны стресса (адреналин, норадреналин)
связываются с лактоферрином и трансферрином, и вытесняют связанное железо.
Увеличение биодоступности свободного железа, позволяет бактериям расти быстрее,
а также из-за увеличение свободных радикалов усиливается интенсивность
воспаления. (Sandrini et al., 2010).
Смертность мышей после введения бактерий или бактериального липополисахарида
значительно снижается при парентеральном введении лактоферрина. В частности,
IL-6 значительно ингибируется лактоферрином. (Actor et al., 2009). Этому белку
приписывают многочисленные иммуномодулирующие свойства (Actor et al., 2009).
Лактоферрин является наиболее важным железо-связывающим белком в молоке и
слизистых оболочках. Пероральный прием железоненасыщенного (апо-ЛФ) лактоферрина
при железодефицитной анемии приводит к увеличению гемоглобина, который частично
вызван снижением IL-6 (Paesano et al., 2010). Перорально принятый бычий
лактоферрин, примерно, на 65% проходит через желудок без изменений (Troost et al.,
2001) и поглощается кишечным эпителием путем эндоцитоза.
Железо, гепцидин и ревматические заболевания.
Какие иммунологические эффекты ожидаются при накоплении железа в макрофагах и
снижении уровня сывороточного железа, обусловленные воспалением? Существует
единство мнений иммунологов и бактериологов, что рост бактерий и воспаление
уменьшаются при уменьшении уровня железа. Поскольку железо является важным
катализатором для генерации активных форм кислорода, воспалительные явления
также понижаются при уменьшении содержания сывороточного железа (Baker und Ghio,
2009).
В настоящее время пока мало данных, подтверждающих иммунологические эффекты,
которые возникают при снижении уровня железа при воспалительных ревматических
заболеваниях, таких как ревматическая полимиалгия. У больных с ревматоидным
артритом описаны случаи увеличения уровням гепцидина, которые коррелировали с
активностью заболевания (Demirag и др.., 2009). Предполагается значительное
увеличение гепцидина, по крайней мере, в ранней фазе ревматической полимиалгии,
так как при полимиалгии в большей степени, чем при ревматоидном артрите,
выражено увеличение провоспалительных цитокинов.
Повышенные уровни гепцидина, объяснимые особенно высоким уровнем IL-6, также
найдены при MCD — мультицентрической болезни Кастельмана, которая представляет
собой доброкачественную поликлональную лимфопролиферацию с выраженной
васкуляризацией лимфоидной ткани. Лечение препаратом Tocilizumab, ингибитором
IL-6 рецепторов, приводит к значительному снижению уровня гепцидина (Song et al.,
2010).
У больных с анемией обусловленной воспалением и имеющимся одновременно дефицитом
железа, уровень гепцидина не увеличен, а уменьшен (Theuer и др., 2009;. Ferrucci
и др., 2010; . Cheng и др., 2010). По-видимому, анемия, увеличенный эритропоэз и
дефицит железа приводят к уменьшению гепцидина, несмотря на одновременное
увеличение маркеров воспаления.
Гепцидин ингибирует синтез IL-6 и TNF-alpha (фактор некроза опухолей – α) в
макрофагах, и, таким образом проявляется противовоспалительный эффект (De
Dominico et al., 2010). Гепцидино-модифицированные мыши (Hepcidin- knockout
Mäuse) в большей степени подвержены эндотоксическому шоку после инъекции
бактериального липополисахарида, чем обычные. Увеличенный синтез гепцидина при
воспалении имеет, таким образом, двойной эффект: с одной стороны,
гепцидин-индуцированное снижение уровня железа, с другой стороны, в силу прямого
действия гепцидина на макрофаги. Мыши с подавленным Hfe–геном имеют пониженное
содержание гепцидина и развиваются, как больные гемохроматозом, патологически
накапливают железо. Из-за снижения уровня гепцидина, в связи с повышенным
синтезом ферритина, в макрофагах, по сравнению с клетками печени, снижается
внутриклеточная концентрация железа, что по мнению авторов после стимуляции
эндотоксином приводит к снижению TNF-alpha и IL-6 (Wang и др. др.., 2009).
Железо накапливается, таким образом, при гемохроматозе в основном в печени и
других органах, но не в макрофагах. Мыши с подавленным Hfe–геном показывают
поэтому ослабленный воспалительный ответ после заражения сальмонеллами.
Другое интересное сообщение касается хронического колита, индуцированного
Piroxicam, сопряженного с повышенным уровнем гепцидина. Целенаправленное
торможение гепцидина привело к значительному снижению колита, вызванному, по
мнению авторов, уменьшением внутриклеточного железа в макрофагах, с последующим
снижением воспалительных цитокинов в том числе путем подавления TLR4 рецептора (Wang
и др.., 2009).
Препараты железа при ревматических заболеваниях.
Низкий уровень сывороточного железа приводит к мягкому подавлению иммунных и
воспалительных реакций и, таким образом, имеет патофизиологический смысл.
Указание на лечение препаратами железа ревматических больных, следовательно, в
принципе стоит ограничить (Baker und Ghio, 2009. Тем не менее, у многих также
имеется воспалительная анемия, и выраженный дефицит железа. В частности,
симптоматический дефицит железа, который проявляется синдромом хронической
усталости, должен лечиться препаратами железа.
Наиболее надежным параметром в диагностике дефицита железа, как правило,
является ферритин. Однако при воспалительных заболеваниях, обнаруживается не
только низкие уровни сывороточного железа, а также, вызванное воспалением,
увеличение ферритина. Ферритин, таким образом, при ревматических заболеваниях,
может быть использован для диагностики дефицита железа только с учётом более
высокого порогового показателя.
В одном исследовании было показано, что уровень ферритина порядка 60 µg/l
является приемлемым индикатором дефицита железа у больных с анемией на фоне
ревматоидного артрита. В 83% случаев анемии у больных ревматоидным артритом с
уровнем ферритина <60 µg/l было показано увеличение гемоглобина в ходе
трехмесячного применения оральных препаратов железа (Hansen und Hansen, 1986).
Пациены с ферритином > 100 µg/l, однако, как правило, не испытывают дефицит
железа.
Дополнительными лабораторными критериями, указывающие на абсолютный дефицит
железа, являются насыщение трансферрином <20%, увеличение растворимых рецепторов
трансферрина (sTFR), или ферритин между 30-100, sTFR/log ферритин > 2 (Munoz и
др.., 2009).
Чтобы избежать обострения ревматических заболеваний, в принципе, необходимо
применять оральные препараты железа. При их непереносимости, альтернативой будет
применение животного (бычьего) лактоферрина, который должен иметь сопоставимый
эффект лечения (Nappi и др.., 2009, Maccio и др.., 2010). Оказывает ли
лактоферрин противовоспалительное действие при ревматических заболеваниях должно
быть уточнено в будущих исследованиях.
Online публикация 01.11.2010.
Actor JK et al., Lactoferrin as a natural immune modulator. Curr Pharm Des.
2009;15(17):1956-73. Review
Allen KJ et al., HFE Cys282Tyr homozygotes with serum ferritin concentrations
below 1000 microg/L are at low risk of hemochromatosis. Hepatology. 2010
Sep;52(3):925-33
Arnold J et al., Hepcidin and inflammatory bowel disease: dual role in host
defence and iron homoeostasis. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2009
Apr;21(4):425-9.
.Audrain MA et al., Anti-lactoferrin autoantibodies: relation between epitopes
and iron-binding domain J Autoimmun. 1996 Aug;9(4):569-74
Bachman E et al., Testosterone Suppresses Hepcidin in Men: A Potential Mechanism
for Testosterone-Induced Erythrocytosis. J Clin Endocrinol Metab. 2010 Jul 21.
Baker JF, Ghio AJ. Iron homoeostasis in rheumatic disease. Rheumatology (Oxford).
2009 Nov;48(11):1339-44
Benito-Garcia E et al., Protein, iron, and meat consumption and risk for
rheumatoid arthritis: a prospective cohort study. Arthritis Res Ther.
2007;9(1):R16
Blake DR et al., Effect of intravenous iron dextran on rheumatoid synovitis. Ann
Rheum Dis. 1985 Mar;44(3):183-8
Brimnes J et al., Specificities of anti-neutrophil autoantibodies in patients
with rheumatoid arthritis (RA). Clin Exp Immunol. 1997 Nov;110(2):250-6
Caccavo D et al., Anti-lactoferrin antibodies in systemic lupus erythematosus:
isotypes and clinical correlates. Clin Rheumatol. 2005 Aug;24(4):381-7
Cheng PP et al., Hepcidin expression in anemia of chronic disease and
concomitant iron-deficiency anemia.Clin Exp Med. 2010 May 25.
Cornish J et al., Lactoferrin is a potent regulator of bone cell activity and
increases bone formation in vivo. Endocrinology. 2004 Sep;145(9):4366-74
Dabbagh AJ et al., Iron in joint inflammation. Ann Rheum Dis. 1993
Jan;52(1):67-73. Review.
Demirag MD et al., Circulating hepcidin in the crossroads of anemia and
inflammation associated with rheumatoid arthritis. Intern Med. 2009;48(6):421-6.
Ferrucci L et al., Proinflammatory state, hepcidin, and anemia in older persons.
Blood. 2010 May 6;115(18):3810-6.
Ganz T. Iron in innate immunity: starve the invaders. Curr Opin Immunol. 2009
Feb;21(1):63-7
Girelli D et al., Reduced serum hepcidin levels in patients with chronic
hepatitis C. J Hepatol. 2009 Nov;51(5):845-52.
Guillen C et al., Iron, lactoferrin and iron regulatory protein activity in the
synovium; relative importance of iron loading and the inflammatory response. Ann
Rheum Dis. 1998 May;57(5):309-14
Hagihara K et al., Tocilizumab ameliorates clinical symptoms in polymyalgia
rheumatica. J Rheumatol. 2010 May;37(5):1075-6.
Hansen TM, Hansen NE. Serum ferritin as indicator of iron responsive anaemia in
patients with rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis. 1986 Jul;45(7):596-602
Harrison-Findik DD. Is the iron regulatory hormone hepcidin a risk factor for
alcoholic liver disease? World J Gastroenterol. 2009 Mar 14;15(10):1186-93.
Review
Hashizume M et al., Tocilizumab, a humanized anti-interleukin-6 receptor
antibody, improved anemia in monkey arthritis by suppressing IL-6-induced
hepcidin production. Rheumatol Int. 2010 May;30(7):917-23.
Iqbal T et al., Is iron overload in alcohol-related cirrhosis mediated by
hepcidin? World J Gastroenterol. 2009 Dec 14;15(46):5864-6
Knovich MA et al., Ferritin for the clinician. Blood Rev. 2009 May;23(3):95-104.
Epub 2008 Oct 2. Review.
Kohgo Y et al., Body iron metabolism and pathophysiology of iron overload. Int J
Hematol. 2008 Jul;88(1):7-15. Epub 2008 Jul 2. Review
Lesbordes-Brion JC et al., Targeted disruption of the hepcidin 1 gene results in
severe hemochromatosis. Blood. 2006 Aug 15;108(4):1402-5.
Maccio A et al., Efficacy and safety of oral lactoferrin supplementation in
combination with rHuEPO-beta for the treatment of anemia in advanced cancer
patients undergoing chemotherapy: open-label, randomized controlled
study.Oncologist. 2010;15(8):894-902.
Magaro M et al., Iron chelation in rheumatoid arthritis: clinical and laboratory
evaluation. Ann Rheum Dis. 1990 Apr;49(4):268-9
Malgorzewicz S et al., Oxidative stress, inflammation and nutritional status
during darbepoetin alpha treatment in peritoneal dialysis patients. Clin Nephrol.
2010 Mar;73(3):210-5
Manolova I et al., Antineutrophil cytoplasmic antibodies in patients with
systemic lupus erythematosus: prevalence, antigen specificity, and clinical
associations. Rheumatol Int. 2001 Jul;20(5):197-204
Moura E et al., Iron release from human monocytes after erythrophagocytosis in
vitro: an investigation in normal subjects and hereditary hemochromatosis
patients. Blood. 1998 Oct 1;92(7):2511-9
Munoz M et al., An update on iron physiology. World J Gastroenterol. 2009 Oct
7;15(37):4617-26. Review.
Nappi C et al., Efficacy and tolerability of oral bovine lactoferrin compared to
ferrous sulfate in pregnant women with iron deficiency anemia: a prospective
controlled randomized study. Acta Obstet Gynecol Scand. 2009;88(9):1031-5
Nemeth E, Ganz T. The role of hepcidin in iron metabolism. Acta Haematol.
2009;122(2-3):78-86. Epub 2009 Nov 10. Review
Oppenheimer SJ. Iron and its relation to immunity and infectious disease. J Nutr.
2001 Feb;131(2S-2):616S-633S; discussion 633S-635S. Review
Paino IM et al., Phagocytosis, oxidative burst, and produced reactive species
are affected by iron deficiency anemia and anemia of chronic diseases in elderly.
Biol Trace Elem Res. 2009 Summer;129(1-3):116-25.
Pinto JP et al., Hepcidin messenger RNA expression in human lymphocytes.
Immunology. 2010 Jun;130(2):217-30.
Porto G, De Sousa M. Iron overload and immunity. World J Gastroenterol. 2007 Sep
21;13(35):4707-15. Review.
Price EA, Schrier SL. Unexplained aspects of anemia of inflammation. Adv Hematol.
2010;2010:508739.
Sandrini SM et al., Elucidation of the mechanism by which catecholamine stress
hormones liberate iron from the innate immune defense proteins transferrin and
lactoferrin. J Bacteriol. 2010 Jan;192(2):587-94.
Sasu BJ et al., Antihepcidin antibody treatment modulates iron metabolism and is
effective in a mouse model of inflammation-induced anemia. Blood. 2010 Apr
29;115(17):3616-24.
Song SN et al., Downregulation of hepcidin resulting from long-term treatment
with an anti-IL-6 receptor antibody (tocilizumab) improves anemia of
inflammation in multicentric Castleman’s disease (MCD). Blood. 2010 Jul 19.
Sow FB et al., Role of STAT1, NF-kappaB, and C/EBPbeta in the macrophage
transcriptional regulation of hepcidin by mycobacterial infection and IFN-gamma.
J Leukoc Biol. 2009 Nov;86(5):1247-58.
Thackeray EW et al., Hepatic Iron Overload or Cirrhosis May Occur in Acquired
Copper Deficiency and is Likely Mediated by Hypoceruloplasminemia. J Clin
Gastroenterol. 2010 May 24.
Theurl I et al., Regulation of iron homeostasis in anemia of chronic disease and
iron deficiency anemia: diagnostic and therapeutic implications. Blood. 2009 May
21;113(21):5277-86.
Troost FJ et al., Gastric digestion of bovine lactoferrin in vivo in adults. J
Nutr. 2001 Aug;131(8):2101-4.
Whitfield JB et al., Effects of alcohol consumption on indices of iron stores
and of iron stores on alcohol intake markers. Alcohol Clin Exp Res. 2001
Jul;25(7):1037-45
Winyard PG et al., Mechanism of exacerbation of rheumatoid synovitis by
total-dose iron-dextran infusion: in-vivo demonstration of iron-promoted oxidant
stress. Lancet. 1987 Jan 10;1(8524):69-72
Young B, Zaritsky J. Hepcidin for clinicians. Clin J Am Soc Nephrol. 2009
Aug;4(8):1384-7.
https://immunendokrinologie.de/html/eisen_und_rheuma.html
Если вы заметили орфографическую, стилистическую или другую ошибку на этой странице, просто выделите ошибку мышью и нажмите Ctrl+Enter. Выделенный текст будет немедленно отослан редактору |
- Главная
- Журнал «Медицинские новости»
- Архив
- №11, 2007
- Особенности коррекции обмена железа при хронических воспалительных заболеваниях кишечника
Ю.В. Горгун, О.М. Каратыш, А.С. Портянко
Белорусская медицинская академия последипломного образования, 1-я городская клиническая больница г. Минска, Белорусский государственный медицинский университет
Потеря крови через желудочно-кишечный тракт является одной из основных причин железодефицитной анемии. Спектр заболеваний, сопровождающихся скрытой или явной гастроинтестинальной кровопотерей, достаточно широк, причем хронические воспалительные заболевания кишечника (ХВЗК) — язвенный колит (ЯК) и болезнь Крона (БК) — занимают в нем одно из ведущих мест. Анемия выявляется у 85% лиц с болезнью Крона и у 68% — с язвенным колитом, при этом в 30% случаев она носит тяжелый характер [11]. Такая высокая частота анемии позволяет рассматривать ее уже не как осложнение поражения кишечника, а как один из ключевых симптомов ХВЗК, коррекция которого нередко вызывает затруднения [7].
В развитии анемии при ХВЗК можно выделить два основных механизма: дефицит железа и нарушение его метаболизма, обусловленное хроническим воспалением [7, 8, 10, 11].
Дефицит железа
В обычных условиях в сутки теряется около 1—2 мг железа (менструальная кровь, слущивающийся эпителий ЖКТ, физиологическая потеря крови через ЖКТ, секреты кожных желез), такое же количество этого микроэлемента всасывается в двенадцатиперстной кишке из продуктов питания, благодаря чему поддерживается постоянное содержание железа в организме (3—4 г). При ХВЗК создаются условия для развития отрицательного баланса железа, что приводит к его дефициту, частота которого достигает 90% [11]. Основной вклад в развитие отрицательного баланса железа вносит увеличение его потерь. Кровавая диарея наблюдается у преобладающего числа пациентов с активным ЯК и у 40% — с БК, в остальных случаях ХВЗК, как правило, имеет место скрытая потеря крови через ЖКТ. Имеются данные о том, что пациенты с ХВЗК меньше получают железа с пищей. Так, потребление железа лицами с БК составляет 9,3 мг/сут, в то время как в контроле – 11,6 мг/сут [10]. Это связано с тем, что больные, особенно женщины, ограничивают свой рацион, исключая из него продукты, вызывающие усиление кишечной симптоматики, — овощи, фрукты, продукты на основе злаковых, относительно богатые железом. При болезни Крона с поражением проксимальных отделов тонкой кишки дополнительным механизмом развития анемии может стать нарушение всасывания железа вследствие воспалительного повреждения дуоденальной слизистой оболочки. В условиях дефицита железа нарушаются гемоглобинизация и образование эритроцитов – они становятся гипохромными, уменьшаются в размерах (микроциты). В ответ на низкий уровень гемоглобина увеличивается выработка эритропоэтина, стимулирующего эритропоэз, что еще больше повышает потребность в железе, которая не может быть удовлетворена.
Анемия хронического воспаления (заболевания)
Существенное влияние на различные звенья метаболизма железа оказывает наличие хронического воспаления. Установление этого факта стало причиной появления в 1966 г. термина «анемия хронического заболевания» (АХЗ), или «анемия хронического воспаления» [14]. Согласно современным представлениям, центральную роль в развитии АХЗ играет гепсидин – пептид, регулирующий транспорт железа из клеток (энтероцитов, макрофагов, дендритных клеток, гепатоцитов). В условиях низкого уровня гепсидина железо транспортируется из указанных клеток в кровь с помощью специального мембранного белка — ферропортина. Благодаря этому механизму транспорта реализуется процесс интестинальной абсорбции железа, а также процесс извлечения железа из депо в гепатоцитах и макрофагах. Высокий уровень гепсидина, наоборот, подавляет процесс экспорта железа за счет блокирования работы ферропортина. Установлено, что развитие воспаления сопровождается усилением синтеза гепсидина, вследствие чего происходит накопление железа в клетках, т.е. оно не поступает из энтероцитов в кровь и не извлекается из клеток ретикулоэндотелиальной системы, богатых ферритином. В результате уровень железа в сыворотке крови снижается, что лимитирует эритропоэз, при этом уровень ферритина, отражающий запасы железа, остается нормальным или повышается [6].
В развитие АХЗ могут вносить вклад и другие механизмы. Так, «острофазовый» белок α1-антитрипсин блокирует захват железа клетками эритроидного ростка. Провоспалительные цитокины (IL–1, IL–6, IFN–γ, TNF–α) обладают способностью ингибировать продукцию эритропоэтина [13]. Установлено, что у пациентов с ХВЗК имеет место низкий уровень эритропоэтина, не адекватный степени анемии. Кроме того, цитокины могут укорачивать время жизни эритроцитов, а также подавлять рост эритроидных клеток-предшественников [7]. В результате при хронических воспалительных заболеваниях наблюдается несоответствие между выраженностью анемии и степенью компенсаторной стимуляции эритропоэза. АХЗ обычно носит нормоцитарный нормохромный характер.
Таким образом, анемия с низким уровнем сывороточного железа при ХВЗК может представлять собой:
1) железодефицитную анемию (ЖДА) вследствие отрицательного баланса железа;
2) анемию хронического воспаления, не связанную с отрицательным балансом железа;
3) сочетание обоих вариантов.
Определение механизма развития гипоферремии имеет принципиальное значение с точки зрения терапии анемии при ХВЗК. Основные лабораторные показатели, использующиеся для дифференциальной диагностики между тремя названными вариантами, представлены в таблице [10]. В качестве основного показателя, позволяющего отличить ЖДА от АХЗ, используют ферритин. Однако необходимо иметь в виду, что ферритин относится к «острофазовым» показателям и его уровень у больных с активным воспалением может неадекватно отражать запасы железа в организме: при ЖДА на фоне воспаления содержание ферритина может быть нормальным или даже повышенным. Как правило, уровень ферритина менее 100 мкг/л и насыщение трансферрина менее 16% на фоне ХВЗК свидетельствуют о наличии дефицита железа [14]. При дифференциальной диагностике целесообразно учитывать также средний объем эритроцита и среднюю концентрацию гемоглобина в эритроците (MCV, MCHC).
Вариант анемии | Сывороточное железо | Ферритин | Трансферрин | Насыщение трансферрина железом | Растворимый рецептор трансферрина |
ЖДА | ↓ | ↓ | ↓ | ↓ | ↑ |
АХЗ | ↓ | ↓ или N | ↓ или N | ↓ | N |
ЖДА+ | ↓ | ↓ | ↓ | ↓ | ↑ или N |
АХЗ | ↓ | ↓ | ↓ | ↓ | ↑ |
Таблица. Показатели обмена железа при ЖДА и АХЗ
Особенности лечения анемии при ХВЗК
При использовании стандартного подхода к лечению железодефицитной анемии у больных с ХВЗК можно столкнуться с существенными трудностями. В 24—74% случаев не удается добиться достаточного ответа на пероральные препараты железа – это касается прежде всего тех пациентов, у которых основную роль в развитии анемии играет фактор воспаления. Как уже указывалось, в этом случае нарушено всасывание железа в кишечнике, что и объясняет отсутствие желаемого эффекта от пероральной терапии. Другая проблема — переносимость лечения. Препараты сульфата железа, являющиеся препаратами первого выбора при ЖДА, нередко вызывают гастроинтестинальные побочные эффекты – тошноту, диарею, вздутие живота, боль в животе. У лиц с ХВЗК эти проявления встречаются чаще и более выражены, чем в контроле, – частота их может достигать 80%, причем в 20% случаев из-за побочных эффектов прием препарата приходится прекращать [1, 2, 5]. Имеются данные о том, что воздействие двухвалентного железа на поврежденную слизистую оболочку ЖКТ повышает локальную продукцию гидроксильных радикалов и провоспалительных цитокинов, усиливая воспаление, и, таким образом, прием традиционных препаратов железа может отрицательно сказываться на течении заболевания [3, 4]. С учетом этого более рациональным представляется назначение при ХВЗК препаратов трехвалентного железа (например, Fe3+-полимальтозный комплекс), которые лучше переносятся и не обладают прооксидантным потенциалом [4, 9]. При нарушении всасывания железа, снижении гемоглобина менее 100 г/л, явной клинической симптоматике анемии, а также при непереносимости или неэффективности пероральной терапии рекомендуют назначение парентеральных препаратов железа. Предпочтительной формой является сахарат железа (III), обладающий лучшей переносимостью, чем декстрант железа [11, 12]. Однако даже при использовании парентеральных препаратов железа добиться эффекта удается не всегда – ответ наблюдается у 50—91% больных. Предикторами плохого ответа являются низкий уровень эритропоэтина, трансферрина, растворимого рецептора трансферрина [8]. В таких случаях используют эритропоэтин, как правило, в комбинации с парентеральными препаратами железа [7, 10].
Приводим описание клинического случая анемии на фоне язвенного колита.
Пациентка П., 1952 г. рожд., инженер-программист. Поступила в 1-ю ГКБ Минска 05.02.2007 г. с жалобами на повышение температуры тела до 38°С, частый (до 10—12 раз в сутки) жидкий стул с примесью крови, вздутие живота, снижение массы тела, отсутствие аппетита, выраженную общую слабость, одышку при незначительной физической нагрузке. Указанные жалобы возникли 5 дней назад без видимой причины и вначале были расценены пациенткой как проявления «пищевого отравления», однако, поскольку симптомы сохранялись, она обратилась к врачу и была госпитализирована. При сборе анамнеза установлено, что расстройства стула наблюдались и ранее – в течение последних 5—7 лет, однако они были выражены в меньшей степени, пациентка связывала их с погрешностями в диете и к врачу не обращалась. В декабре 2006 г. перенесла парапроктит – проводилось хирургическое лечение в стационаре, исследование кишечника не выполнялось. При объективном осмотре: пониженного питания (ИМТ=17,9), кожные покровы бледные, сухие, тургор кожи снижен, пастозность голеней и стоп. Язык влажный, обложен белым налетом. Частота дыхания 20 в 1 минуту. Сердечные тоны приглушены, ритмичные, ЧСС=96 уд/мин, АД 100/60 мм рт. ст. Живот слегка вздутый, мягкий, при пальпации болезненный по ходу левых отделов ободочной кишки. Печень у края реберной дуги, край мягкий, безболезненный. Селезенка не пальпируется. Лабораторные исследования выявили лейкоцитоз со сдвигом формулы влево (лейкоциты 10,8х109/л, палочкоядерные 40%, токсическая зернистость нейтрофилов ++), тромбоцитоз (до 729х109/л), СОЭ до 42 мм/ч, железодефицитную анемию (гемо-глобин 90 г/л, эритроциты 3,8х1012/л, цветной показатель 0,71, микроциты +++, выраженная гипохромия, сывороточное железо 2,7 мкмоль/л), гипопротеинемию (общий белок 54 г/л), гипоальбуминемию (альбумин 20,97 г/л), гипохлоремию (88 ммоль/л). Мазок из прямой кишки на патогенную флору отрицательный. При исследовании стула: положительная реакция на кровь, лейкоциты и эритроциты в большом количестве. Ультразвуковое исследование органов брюшной полости не выявило каких-либо существенных отклонений. При колоноскопии осмотрена вся толстая кишка и 15 см подвздошной кишки. Начиная с селезеночного изгиба ободочной кишки и до ануса слизистая оболочка пестрая, шероховатая, отечная, гиперемированная. Обнаруживаются множественные очаги петехий, точечных эрозий, геморрагий, имеются единичные плоские язвы, сосудистый рисунок не прослеживается. Определяются множественные мелкие (0,2—0,3 см) псевдополипы. Взята биопсия из всех осмотренных отделов. Заключение: язвенный колит, обострение тяжелой степени. Гистологическое исследование: биоптаты из тонкой кишки и правых отделов ободочной кишки – фрагменты слизистой оболочки обычного строения; биоптаты из левых отделов ободочной кишки – фрагменты слизистой оболочки толстой кишки с выраженной полиморфноклеточной инфильтрацией собственной пластинки слизистой оболочки, резким нарушением строения крипт, инфильтрацией поверхностного эпителия нейтрофилами, очаговой дисплазией эпителия низкой степени, вероятно, воспалительного генеза. Поверхностный эпителий с выраженными регенераторно-дистрофическими изменениями, содержание крипт резко снижено. Грануляционная ткань. Виллиформная слизистая оболочка. Гистологический индекс активности 5,4. Заключение: хронический активный диффузный непрерывный колит с деструкцией крипт и неопределенной дисплазией.
На основании имеющихся данных выставлен клинический диагноз:
Основной: язвенный колит впервые выявленный, левостороннее поражение, активность высокой степени.
Осложнения: железодефицитная анемия средней степени тяжести. Недостаточность питания средней степени. Острый гнойный парапроктит в анамнезе.
Назначено лечение: диета, богатая белком, с исключением клетчатки, внутривенное капельное введение преднизолона 30 мг 2 раза в сутки, ципрофлоксацин парентерально 500 мг в сутки, регидратационная терапия (трисоль, изотонический раствор глюкозы), растворы аминокислот (аминостерил) внутривенно.
На фоне проводимой терапии состояние пациентки улучшилось – частота стула снизилась до 2—4 раз в сутки, исчезла видимая кровь в стуле, нормализовалась температура тела, несколько улучшилось самочувствие. В результатах контрольных лабораторных исследований через 12 дней – положительная динамика: лейкоциты 9,3х109/л, палочкоядерные 10%, тромбоциты 394х109/л, СОЭ 27 мм/ч, однако сохраняется анемия (гемоглобин 93 г/л, эритроциты 4,1х1012/л, сывороточное железо 0,7 мкмоль/л). С учетом улучшения состояния проведена коррекция лечения: парентеральное введение преднизолона заменено на пероральное (40 мг/сут) с постепенным снижением дозы, отменена инфузионная терапия и антибиотикотерапия, назначен месалазин 3 г/сут. Учитывая клинические симптомы анемии (одышка, слабость), Hb менее 100 г/л, а также низкий уровень сывороточного железа, назначен феррум-лек внутривенно по 2 мл через день. На введение феррум-лека пациентка отреагировала аллергической реакцией в виде крапивницы. Препарат был отменен, назначен мальтофер (Fe3+-полимальтозный комплекс, «Vifor», Швейцария) 200 мг/сут. Через неделю после коррекции лечения: состояние пациентки удовлетворительное, улучшение аппетита, нормализация стула (1—2 раза в сутки, оформленный), проявления крапивницы исчезли. Назначенное лечение переносит хорошо. Данные лабораторных исследований: лейкоциты 8,5х109/л, палочкоядерные 6%, тромбоциты 237х109/л, СОЭ 24 мм/ч, гемоглобин 96 г/л, эритроциты 4,0х1012/л, сывороточное железо 4,1 мкмоль/л. Пациентка выписана из стационара 25.02.2007, ей рекомендовано продолжить прием преднизолона с постепенным снижением дозы на 5 мг в неделю, месалазина и мальтофера в прежних дозах, назначен контрольный осмотр через 1 месяц. При осмотре через 5 недель после выписки: жалоб не предъявляет, стул 1 раз в сутки, оформленный, поправилась на 4 кг. Продолжает принимать преднизолон (на момент визита доза 10 мг/сут), месалазин (3,0 г/сут), мальтофер (200 мг/сут). Лечение переносит нормально. Общий анализ крови: гемоглобин 119 г/л, эритроциты 4,5 х1012/л, ЦП 0,79, лейкоциты 7,4х109/л, палочкоядерные 4%, тромбоциты 243х109/л, СОЭ 17 мм/ч. Эффект проводимой терапии оценен как удовлетворительный, пациентке рекомендовано в дальнейшем снижать дозу преднизолона на 2,5 мг в неделю до полной отмены, продолжить поддерживающее лечение месалазином на длительный срок, а также, учитывая положительную динамику со стороны красной крови, прием мальтофера в течение месяца с последующим лабораторным контролем, коррекцией дозы и длительности приема препарата. Кроме того, через 2 месяца запланировано проведение контрольной ректосигмоскопии для оценки полноты ремиссии язвенного колита.
Представленный клинический случай демонстрирует возможность коррекции анемии на фоне ХВЗК с помощью пероральной терапии препаратами трехвалентного железа (мальтофер).
Литература
1. De Silva A.D., Mylonaki M., Rampton D.S. // Inflamm. Bowel. Dis. – 2003. – V.9. — P. 316–320.
2. De Silva A.D., Tsironi E., Feakins R.M., Rampton D.S. // Aliment. Pharmacol. Ther. — 2005. – V. 22. – P. 1097–1105.
3. Erichsen K., Hausken T., Ulvik R.J. et al. // Scand. J. Gastroenterol. — 2003. – V. 38. – P. 543–548.
4. Erichsen K., Ulvik R.J., Grimstad T. et al. // Aliment. Pharmacol. Ther. – 2005. — V. 22. – P. 831–838.
5. Erichsen K., Ulvik R.J., Nysaeter G. et al. // Scand. J. Gastroenterol. – 2005. – V. 40. – P.1058–1065.
6. Ganz T. // J. Amer. Soc. Nephrol. – 2007. – V. 18. – P. 394–400.
7. Gasche C., Lomer M. C. E., CavillI., Weiss G. // Gut. – 2004. – V.53. – P. 1190—1197.
8. Gasche C., Waldhoer T., Feichtenschlager T. et al. // Amer. J. Gastroenterol. – 2001. – V. 96. – P. 2382–2387.
9. Harvey R.S., Reffitt D.M., Doig L.A. et al. // Aliment. Pharmacol. Ther. – 1998. – V. 12. – P. 845—848.
10. Kulnigg S., Gasche C. // Aliment. Pharmacol. Ther. – 2006. – V. 24. – P. 1507–1523.
11. Mickisch O., Baniewicz W., Lutz-Vorderbrugge A. et al. // Z. Gastroenterol. – 2002. – Bd 40. – S. 241—248.
12. Schroder O., Mickisch O., Seidler U. et al. // Amer. J. Gastroenterol. – 2005. – V. 100. — P. 2503–2509.
13. Strong S.A., Pizarro T.T., Klein J.S. et al. // Gastroenterology. – 1998. – V. 114. – P. 1244–1256.
14. Weiss G., Goodnough L.T. // New Engl. J. Med. – 2005. – V. 352. – P. 1011–1023.
Медицинские новости. – 2007. – №11. – С. 82-84.
Внимание! Статья адресована врачам-специалистам. Перепечатка данной статьи или её фрагментов в Интернете без гиперссылки на первоисточник рассматривается как нарушение авторских прав.
Содержание »
Архив »